772.反向输出-《最终诊断》
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?基质硬化调节 ec 增殖、血管生成、血管生长和分支,为了研究这种联系,我们评估了 lm 中的脉管系统,并观察了基质硬度和 cd31 血管面积之间的相关性(图h)。当在凝胶内培养时,允许成纤维细胞重塑基质,mafs 诱导 ec 发芽的程度显着高于cafs(图i-k)。因此,maf 支持伴随局部 ecm 重塑的细胞因子产生血管生成。
4、肾素-血管紧张素系统抑制目标成纤维细胞
?对新鲜分离的 maf 与肝源性成纤维细胞的 qpcr 分析显示 ras 系统的所有关键成分(血管紧张素原[agt]、肾素[ren]、血管紧张素转化酶[ace]和at-1[agtr1]的表达显着增加)。此外,mafs 表达的 agt 和 agtr1 水平显着高于cafs(图l-o)。为了表征 ras 靶向对 maf 功能的影响,我们在用氯沙坦(一种at-1阻滞剂)或卡托普利(一种ace抑制剂)治疗后进行了凝胶收缩试验。在低浓度(氯沙坦为1mm,卡托普利为5mm)和高浓度(氯沙坦为10mm,卡托普利为 50mm)时,两者都显着降低了 maf 凝胶收缩(图p-r)。
5、ras 抑制降低转移基质硬度并重塑微环境
?与无高血压组和非 ras 治疗组2相比,接受抗 ras 药物治疗的患者组织硬度显着降低(图a-b)。进一步评估(通过对同一患者组中的col-1、asma 和 pmlc2 染色)是否可以通过 maf 激活的下调来解释转移刚度的差异。虽然高血压与 pmlc2 染色的增加相关,但我们没有观察到对asma 和 col-i 的影响(图c-h)。在所有组中,抗 ras 治疗显示 maf 激活和 ecm 沉积显着减少(图c-h)。抗ras药物的作用独立于特定的 ras 抑制治疗。观察到转移僵硬(不同条件±高血压±抗ras药物)与col-i、asma和p-mlc2表达之间呈正相关(图i-k),表明maf激活水平有助于组织僵硬在lm。总之,接受抗 ras 治疗的患者显示出低肌成纤维细胞/ecm 特征,这解释了转移硬化的减少。
6、at1r 信号转导通过 rhoa 介导 maf 激活
?接下来,作者想确定 ras 抑制如何导致 maf 激活减少。体外用氯沙坦或卡托普利处理 maf 表明 lox 和 col1a1 mrna 表达降低(图a-b)。p-mlc2 在 ras 抑制后也显着减少(图c-d)。氯沙坦和卡托普利治疗显着降低了 arhgef1 的酪氨酸磷酸化,并导致活性 rhoa 减少(图e-h)。类似地,arhgef1 的敲低导致 p-mlc2 减少,支持血管紧张素-arhgef1-rhoa 轴在 maf 中的作用(图i-j)。总的来说,我们结果表明 ras 通路抑制剂通过抑制 maf 主动收缩(图k)以及减少胶原蛋白生成和交联来阻止基质硬化,从而改善肿瘤纤维化过程。
7、ras 抑制增加了贝伐单抗的抗血管生成作用
?基质硬度不受单独贝伐单抗治疗的影响(图a-b)。在 bev-组中,与非 ras 治疗的高血压患者和无高血压患者相比,抗 ras 治疗导致组织硬度降低(图a,c)。类似地,在 bev 组中,在抗 ras 治疗的患者中也观察到了相同的基质硬度降低(所有p<0.001)(图a,d)。此外,抗 ras 治疗组的硬度降低与特定治疗无关。单独的贝伐单抗治疗不影响 lm 内的 col-i、asma 和 p-mlc2。为了评估抗血管生成治疗(贝伐珠单抗治疗)和ras 抑制对血管系统的综合影响,我们测量了一大群 crc lm 中的血管密度。与 bev-组相比,bev+组的血管密度显着降低了48.7%± 8.2%。然而,与非ras、bev+治疗相比以及与所有 bev-组。这与使用的 ras 治疗类型无关。因此,抗 ras 药物靶向组织硬度,从而影响贝伐单抗的疗效。
8、通过 ras 和血管生成抑制减少 ec 增殖
? ec 增殖随硬度增加而增加,vegf 进一步诱导增殖,低硬度时 vegf 效应最高(图a-c)。此外,我们分析了在不同密度的纤维蛋白原基质(刚度的代表)中存在或不存在 vegf 的情况下 ec 发芽。ec发芽(芽的数量和长度)随密度增加。vegf 导致在所有条件下进一步发芽,vegf 在软基质中的作用更显着,如 ec 增殖的情况。
?为了了解抗 ras 药物和贝伐单抗的组合如何影响转移灶内的 ec,我们量化了它们对 ec 增殖的影响。单独的贝伐单抗治疗导致 ec 增殖减少 56.1%±11.0%。由于转移僵硬与独立于治疗的转移内的 ec 增殖相关,我们评估了 ras 抑制是否足以减少 ec 增殖。在未接受抗血管生成治疗的患者中,ras 抑制并未显着降低 ec 增殖;然而,在接受贝伐单抗和抗 ras 药物治疗的患者中,ec增殖进一步降低了 78.1%±9.2%)。
9、ras 和血管生成抑制改善血管完整性
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